Código: 506207 | Asignatura: GENÉTICA MOLECULAR | ||||
Créditos: 6 | Tipo: Obligatoria | Curso: 2 | Periodo: 2º S | ||
Departamento: Agronomía, Biotecnología y Alimentación | |||||
Profesorado: | |||||
PEREZ GARRIDO, MARÍA GUMERSINDA (Resp) [Tutorías ] | RUIZ UMAÑA, JUSDIN [Tutorías ] |
Fundamentos moleculares fisiológicos de la biotecnología/Biología y genética molecular
Organización de genes y genomas. Mecanismos de regulación de la expresión génica: control de la transcripción y control postranscripcional. Metodología para el estudio de la expresión génica. Regulación de la actividad y contenido de proteínas. Marcadores moleculares genéticos.
RA03. Tener las habilidades experimentales y analíticas para trabajar con autonomía en un laboratorio siendo capaz de plantear experimentos y de describir, analizar, evaluar e interpretar la información resultante para proponer soluciones alternativas y novedosas frente a problemas conocidos y/o emergentes TIPO: Conocimientos o contenidos.
RA04. Conocer los principios fundamentales de las ciencias experimentales para ser capaz de integrarlos en los contenidos propios del grado TIPO: Conocimientos o contenidos.
RA10. Demostrar capacidad para trabajar en equipos multidisciplinares y multiculturales TIPO: Habilidades o destrezas
RA18. Dominar las bases moleculares, celulares, fisiológicas, genéticas y de herencia génica que determinan la organización, funcionamiento e integración de los seres vivos y su interacción con el medio natural TIPO: Competencias.
RA20.Dominar fundamentos moleculares, herramientas, métodos y técnicas instrumentales de purificación, cuantificación y caracterización de las biomoléculas para aislar, diseñar, construir, modificar, clonar, expresar y detectar proteínas y ácidos nucleicos. TIPO: Competencias.
Metodología - Actividad | Horas Presenciales | Horas no presenciales |
A-1 Clases expositivas/participativas | 26 | - |
A-2 Prácticas | 30 | - |
A-3 Actividades de aprendizaje cooperativo | - | - |
A-4 Realización de trabajos/proyectos en grupo | - | 25 |
A-5 Estudio y trabajo autónomo del estudiante | - | 60 |
A-6 Tutorías | - | 5 |
A-7 Pruebas de evaluación | 4 | - |
Total | 60 | 90 |
Actividad de evaluación |
Peso (%) | Carácter recuperable |
Nota mínima requerida |
---|---|---|---|
SE1. Pruebas escritas.* | 50 | Recuperable mediante prueba escrita | 5 |
SE3. Presentaciones orales.** |
20 | No | - |
SE4. Trabajos e informes.*** | 10 | No | - |
SE5. Pruebas e informes de trabajo experimental.**** | 20 | Recuperable mediante prueba escrita | 5 |
*Se realizarán parciales de la asignatura que serán liberatorios para todo aquél /aquélla que obtenga una nota igual o superior a 5. Aquellos parciales que no hayan obtenido la nota mínima exigida se recuperaran en la convocatoria ordinaria. En caso de no obtener la nota mínima en la ordinaria, los alumnos deberán presentarse al examen extraordinario de la asignatura completa.
**Los alumnos realizarán por grupos presentaciones en power point relacionadas con los diferentes módulos de la asignatura. Se evaluará el dominio del tema presentado, la claridad y capacidad de síntesis en la exposición de los contenidos y la precisión en la utilización del lenguaje de la asignatura. Se evaluará la capacidad de síntesis y de generación de conclusiones.
***Como Trabajo Individual, se considerará la nota obtenida en los CUESTIONARIOS que se realizarán al final de cada una de las unidades del temario y se avisará con una semana de antelación.
****En este apartado se valorarán los informes de prácticas que consistirán en contestar a todos los puntos incluidos en los guiones de prácticas (RESULTADOS y CUESTIONARIOS) que se entregarán al alumnado. Será necesario asistir al 80 % de las sesiones prácticas, para obtener calificaciones suficientes para ponderar en la evaluación continua.
Nota: Si en alguna de las actividades no se cumpliera el mínimo para ponderar, la nota de la asignatura será como máximo de 4,9 sobre 10 (suspenso).
1. METODOS Y TECNICAS EN GENETICA MOLECULAR.
Genética clásica vs. Genética reversa. Fundamento de las técnicas básicas utilizadas en genética molecular. Transferencia de ácidos nucleicos y proteínas a membranas. Genotecas, tipos y aplicación. RT-PCR. Proteínas recombinantes. Proyectos genoma. Análisis y Comparación de Genomas. Fundamentos de la secuenciación de genomas. Detección de sintenias. Exploración de bases de datos de DNA, RNA (ESTs) y proteínas. Técnicas básicas para la caracterización de la expresión génica. Técnicas de cuantificación de mRNA. Identificación de genes con expresión génica diferencial. Análisis global de transcritos: RNA seq, análisis del perfil de expresión génica, redes de expresión génica, aplicaciones del análisis de expresión génica.
2. ESTRUCTURA, ORGANIZACIÓN Y FUNCION DEL MATERIAL HEREDITARIO.
ESTRUCTURA: Concepto de gen, genes de procariotas y eucariotas. Intrones, exones, genes solapados, colinearidad, sintenia.
ORGANIZACIÓN: Secuencias repetidas, tipos, cambios de tamaño del genoma debidos a la presencia de secuencias repetidas, familias multigénicas, origen, diversificación y función de las mismas como consecuencia de mutaciones puntuales en la secuencia.
FUNCION: Teoría un gen, una enzima. Experimentos de Beadle y Tatum, control genético de las reacciones bioquímicas, un gen un ARNm, un gen un polipéptido, un gen un antígeno, un cistrón un polipéptido. Análisis de la función génica. Knock-out génico.
3. MECANISMOS DE REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENICA:
3.1.-EN PROCARIOTAS.
Genes de expresión constitutiva y regulada. Coordinación de la expresión génica en procariotas: Los operones bacterianos. Control de la iniciación de la transcripción: Operones de control positivo y negativo, inducibles y reprimibles. El operón lac de Escherichia coli y el modelo de Jacob y Monod. Terminación de la transcripción en procariotas: terminadores intrínsecos y dependientes de rho. Control de la terminación de la transcripción: atenuación y antiterminación. El operón del triptófano y otros operones de genes implicados en rutas biosintéticas. La regulación génica mediada por ARN no codificantes.
3.2.-EN EUCARIOTAS.
Regulación del inicio de la transcripción mediante factores de transcripción y secuencias que actúan en cis. Tipos de factores de transcripción .Regulación del ciclo celular, regulación por metales y regulación hormonal. Regulación del procesamiento, estabilidad y traducción del ARNm eucariótico. Maduración de los pre-ARNm. La regulación del splicing y el splicing alternativo. Poliadenilación alternativa. Editado del ARN. Regulación de la longevidad de los ARNm. Degradación de los ARNm eucariotas. Mecanismos de control de la calidad de los ARNm. El ARN interferente y los microARN. Caenorhabditis elegans y el descubrimiento de los micro ARN.
4. EPIGENETICA.
Concepto. Sistemas de metilación en bacterias. Metilación del ADN. Metilación de citosina en vertebrados y plantas. Metilación y silenciamiento de genes. Defensas contra elementos transponibles. Regulación por mecanismos epigenéticos. Tipos de cromatina: heterocromatina constitutiva, facultativa y eucromatina. Regulación epigenética. Regulación de la transcripción mediante metilación del ADN. Regulación mediante variaciones en el empaquetamiento de la cromatina. Complejos remodeladores de la cromatina. El desplazamiento de los nucleosomas. Modificaciones químicas de las histonas: el código de las histonas. Establecimiento y mantenimiento de las marcas epigenéticas. Herencia de patrones de metilación. Relación metilación versus transcripción. Metilación del ARN.
5. REGULACION GENETICA DEL DESARROLLO EN ANIMALES Y PLANTAS.
Genes homeóticos en plantas. Factores de transcripción, promotores y secuencias reguladoras miRNA y siRNA. Arabidopsis thaliana y Antirrhinum majus como sistemas modelos.
Genes involucrados en procesos de desarrollo en animales: D.melanogaster como modelo.
6. MARCADORES MOLECULARES.
Concepto. Tipos (morfológicos, proteicos, moleculares).
Marcadores moleculares de primera generación: RFLP y VNTR. Análisis y obtención. De segunda generación: RAPDS y AFLPs (dominantes) y CAPS, SCARS, y microsatélites (codominantes) y de tercera generación (derivados de secuenciación masiva) SNPS, INDELS. Análisis y obtención.
Aplicación de marcadores moleculares. Biodiversidad, construcción de mapas.
PRACTICA 1. Objetivos y plan de trabajo.
PRACTICA 2. Aislamiento de RNA.
PRACTICA 3. Cuantificación y análisis de integridad. Síntesis de cDNA
PRACTICA 4. Manejo base de datos. Análisis de SNPs, splicing alternativo mediante el programa IGV. Anotación automática vs. anotación manual.
PRACTICA 5. Diseño de primers. Análisis de los sitios de restricción de un gen específico y elección del vector de clonación.
PRACTICA 6. Análisis de una familia multigénica
PRACTICA 7. Amplificación de un gen específico mediante PCR.
PRACTICA 8. Purificación de un fragmento de PCR. Clonaje.
PRACTICA 9. Transformación.
PRACTICA 10. Secuenciación simple. Análisis de resultados.
PRACTICA 11. Marcadores moleculares STRs. Aplicación.
PRACTICAS DE AULA: Problemas de Genética Molecular.
Acceda a la bibliografía que el profesorado de la asignatura ha solicitado a la Biblioteca.
LEWIN . Gene XII, 2019. Edición digital.
WATSON, J. D.; NEGRETE, J. H. Biología molecular del gen. [s. l.]: Editorial Médica Panamericana, 2016. ISBN 978-607-9356-89-7.
El profesorado facilitará al alumnado todo el material de estudio necesario.
Aulario y laboratorios e instalaciones de la ETSIA (edificios Los Olivos y El Sario). Campus Arrosadía.
Los lugares concretos donde se desarrollan cada una de las actividades se publicarán al dar comienzo la asignatura.